乾燥血塗片時溫度不能超過多少度

1. 滲透檢測中乾燥溫度不能超過多少

滲透溫度一般控制在10~50℃范圍內，溫度太高，滲透劑容易干在被檢工件上，給清洗帶來困難；溫度太低，滲透劑變稠，動態滲透參量受到影響。當被檢工件的溫度不在推薦范圍內時，可進行性能對比試驗，以此來驗證檢測結果的可靠性。
在整個滲透時間內應讓被檢表面處於潤濕狀態。

一般步驟及要求：
1.被檢物表面處理。
2.施加滲透液。
3.停滯一定時間。
4.表面滲透液清洗。
5.施加顯像劑。
6.缺陷內部殘留的滲透液被顯像劑吸附出來，進行觀察。
7.缺陷判定。

一、表面處理
對表面處理的基本要求就是，任何可能影響滲透檢測的污染物必須清除干凈，同時，又不能損傷被檢工件的工作功能。滲透檢測工作準備范圍應從檢測部位四周向外擴展25mm以上。
污染物的清除方法有：機械清理，化學清洗和溶劑清洗，在選用時應進行綜合考慮。特別注意塗層必須用化學的方法進行去除而不能用打磨的方法。

二、滲透劑的施加
常用的施加方法有噴塗、刷塗、澆塗和浸塗。
滲透時間是一個很重要的因素，一般來說，施加滲透劑的時間不得少於10min，對於應力腐蝕裂紋因其特別細微，滲透時間需更長，可以長達2小時。
滲透溫度一般控制在10~50℃范圍內，溫度太高，滲透劑容易干在被檢工件上，給清洗帶來困難；溫度太低，滲透劑變稠，動態滲透參量受到影響。當被檢工件的溫度不在推薦范圍內時，可進行性能對比試驗，以此來驗證檢測結果的可靠性。
在整個滲透時間內應讓被檢表面處於潤濕狀態。

三、滲透劑的去除
在滲透劑的去除時，既要防止過清洗又要防止清洗不足，清洗過度可能導致缺陷顯示不出來或漏檢，清洗不足又會使得背景過濃，不利於觀察。
水洗型滲透劑的去除：水溫為10~40℃，水壓不超過0.34MPa，在得到合適的背景的前提下，水洗的時間越短越好。
後乳化型滲透劑的去除：乳化工序是後乳化型滲透檢測工藝的最關鍵步驟，必須嚴格控制乳化時間防止過乳化，在得到合適的背景的前提下，乳化的時間越短越好。
溶劑去除型滲透劑的去除：應注意不得往復擦拭，不得用清洗劑直接沖洗被檢表面。

四、顯像劑的施加
顯像劑的施加方式有噴塗、刷塗、澆塗和浸塗等，噴塗時距離被檢表面為300~400mm，噴塗方向與被檢面的夾角為30~40°，刷塗時一個部位不允許往復刷塗幾次。

五、觀察
觀察顯示應在顯像劑施加後7~60min內進行。
觀察的光源應滿足要求，一般白光照度應大於1000Lx，無法滿足時，不得低於500Lx，熒光檢測時，暗室的白光照度不應大於20Lx，距離黑光燈380mm處，被檢表面輻照度不低於1000μW/ 。
在進行熒光檢測時，檢測人員進入暗室應有暗適應時間。

六、缺陷評定
按照標准要求進行記錄和評定。

2. 血標本未能及時送檢在適宜的溫度下儲存不能超過幾小時

血液標本送檢的有效時限-檢驗知識

（1） 凝血項目、電解質項目、肝功及多數血液酶類生化項目——應盡快送檢，在2小時內檢驗。
（2） 血常規項目——應在4小時內完成檢驗。
（3） 血培養項目——應在采血後盡快放入35℃培養箱中，超過2小時可能降低微生物培養的陽性率。
（4） 多數抗原-抗體檢測項目——全血室溫（4℃為佳）可保存24小時，或分離血清-20℃保存。
（5） 在環境溫度超過30℃的條件下，所有標本都應盡快送往檢驗科醫學教育|網。
如果早晨抽血時間太早，至送檢時標本已室溫放置超過2小時，標本會因細胞代謝、溶血、蒸發等原因造成許多項目的結果偏差，如：鉀、乳酸脫氫酶、谷丙轉氨酶、穀草轉氨酶、血紅蛋白、酸性磷酸酶等升高，鈉、血糖等降低。
因此檢驗科建議：住院病房早晨抽血時間應控制在7：00以後，標本應在8：00左右送至檢驗科。

3. 為什麼塑料製品在烘乾過程中溫度不能超過100度，植物樣品在烘乾過程中不超過70度是錯誤的說法

不同的塑料製品耐高溫度不一樣，有的三十、四攝氏度就變形，也有的能耐個一百多攝氏度。
植物樣品的乾燥溫度應該是分階段的。比如前期乾燥時不宜超過70度,後期就不宜超過75度了。
個人看法，供參考。

4. 塑料製品在烘乾過程中溫度不能超過多少

普通塑料加熱溫度不能大於60度。

塑料是指以高分子量的合成樹脂為主要組分，加入適當添加劑，如增塑劑、穩定劑、抗氧化劑、阻燃劑、著色劑等，經加工成型的塑性（柔韌性）材料，或固化交聯形成的剛性材料。

優點

1．大部分塑料的抗腐蝕能力強，不與酸、鹼反應。

2．塑料製造成本低。

3．耐用、防水、質輕。

4．容易被塑製成不同形狀。

5．是良好的絕緣體。

6．塑料可以用於制備燃料油和燃料氣，這樣可以降低原油消耗。

缺點：

1、回收利用廢棄塑料時，分類十分困難，而且經濟上不合算。

2、塑料容易燃燒，燃燒時產生有毒氣體。例如聚苯乙烯燃燒時產生甲苯，這種物質少量會導致失明，吸入有嘔吐等症狀，PVC燃燒也會產生氯化氫有毒氣體，除了燃燒，就是高溫環境，會導致塑料分解出有毒成分，例如苯等。

3、塑料是由石油煉制的產品製成的，石油資源是有限的。

4、塑料埋在地底下幾百年、幾千年甚至幾萬年也不會腐爛。

5、塑料的耐熱性能等較差，易於老化。

5. 瑞氏染色步驟

操作步驟：
1.滴加瑞氏吉姆薩A液(約0.5ml-0.8ml)塗片上，並讓染液覆蓋整個標本染色1min；
2.
再將瑞氏吉姆薩B液加於A液上面（滴加量為A液的2-3倍），以嘴或洗耳球吹出微風使液面產生漣漪狀，使兩液充分混合，染色3-10min。（染血片時間可略短，染骨髓片時間應視細胞量多少而異）
3.水洗（沖洗時不能先倒掉染液，應以流水沖去，以防有沉渣沉澱在標本上），乾燥、鏡檢。
注意事項：
1.
染色時間須視何種標本，塗片厚度，有核細胞多少，何種細胞及室溫等而定；通常染血液塗片時滴加B液後染2-4分鍾，染骨髓片則應不少於8分鍾；氣溫較低時，可適當延長染色時間。染色結果如出現嗜酸性粒細胞變鹼，則考慮是否染色時間太長所致。
2.做骨髓塗片時，因為骨髓纖維蛋白含量較高，凝固較快，所以塗片過程要快。骨髓不可用草酸鹽抗凝，否則會使血細胞核變形，核染色質緻密，胞漿空泡形成，出現草酸鹽結晶。
3.染液量需充足，勿使染液蒸發乾燥，以防染料沉著於塗片上。
4.做細胞染色時，當天氣寒冷或濕度較大時，應於37℃溫箱中保溫促干，以免細胞變形縮小或在染色時脫片。
5.染料放置時間越長，染色效果越好。
6.
本試劑應由專業人員使用。
拓展資料
Wrfeht和Giemsa都於1902年報告了各自的新的血液學染色劑，其主要特點是在制備多色性亞甲藍（主要指天青B）方面做了改進，使血細胞和瘧原蟲著色較好，操作簡便。
上述染色法均是含伊紅和亞甲基藍衍生物的復合染料。在臨床檢驗工作中，瑞氏染色法常用於血液、其他體液、分泌物和排泄物塗片中各種細胞的染色，有利於在顯微鏡下觀察細胞形態及對細胞進行分類檢查。
【染色原理】
瑞氏染色分兩相進行，第一相是酸性染料伊紅與細胞中的鹼性物質如血紅蛋白、嗜酸性顆粒等結合；鹼性染料天青B與細胞中的酸性物質如核染色質（chro－matin）、特異中性顆粒、血小板及富含核蛋白的胞質結合。第二相是天青B和伊紅在適宜條件下形成紫色的天青B一伊紅復合物（azure
B－eosin
complex），這種復合物是形成Romanowsky－Giemsa效應的基礎。
Romanowsky－Giemsa效應包括：①白細胞核染色質染成紫色，瘧原蟲的染色質染成紅色；②中性粒細胞的顆粒及血小板顆粒區染成紫色；③產生本效應必須有兩種染料參與，一種是天青B，另一種是伊紅。
Wittekind（1985）指出，天青B與DNA分子中的磷酸基結合，而伊紅既與DNA分子中的陽離子部位結合，又與天青B結合，與天青B的結合力來源於電子供一受體的電子轉移力，天青B的甲氨基（－NHCHs）與伊紅分子中的叛基（－COOH）間形成氫鍵。因此，天青B是噻嗪類染料中能與伊紅形成復合物的最佳選擇，因為擁有四個甲基側鏈的亞甲藍不能以氫鍵與伊紅結合。
甲醇除作為染料的溶劑，能將瑞氏染料解離成帶正電荷的天青B和帶負電荷伊紅外，因其具有脫水力，還可將細胞固定為一定形態，並使蛋白沉澱為顆粒狀、網狀結構，增加細胞與染料的接觸表面，增強染色效果。
細胞中的各種有機物質（特別是蛋白質）、染料等對環境的州值非常敏感。如環境偏酸，氫離子增多，降低對鹼性染料的親和力；增強伊紅著色，出現異常紅染；相反，則可出現異常藍染。最佳環境應維持在PH值6
4～6、8.因此，必須使用緩沖溶液。
參考資料：
搜狗網路_瑞氏染色
瑞氏染色原理及方法_醫學教育網

6. 血塗片放置時間過長未染色會不會影響質量

血塗片乾燥後，是可以放置比較長的時間再進行染色而不會影響染色結果的。當然，放置太久，比如放了兩三天，那麼也是有可能對染色及觀察構成或多或少的影響，這些影響就很難說了，不過畢竟在現實工作中也不可能放置那麼久再染色，如果時間允許你放置而不需要馬上染色，一般放幾個小時再染色是完全沒有問題的。

7. 多油斷路器內部需乾燥時，乾燥最高溫度不宜超過多少度

PP-
T20
如存儲乾燥可以無需再乾燥，但為保險起見最好乾燥；
乾燥溫度
60-80度，乾燥3-4小時；注塑溫度一般設定在220-260之間，不要超過275度。

8. 葯物乾燥溫度一般不超多少度，含水量多少

人工乾燥的溫度，應根據葯物性質而靈活掌握。一般葯物以不超過80℃為宜。含芳香揮發性充分的葯材以不超過50℃為宜。乾燥後的飲片需放涼後再貯存，否則，余熱能使飲片回潮，易發生霉變。但乾燥後的飲片含水量應控制在8%~12%為宜。SFY-20A型烘乾法水分儀

9. 瑞氏染色的步驟是什麼

操作步驟：

1.滴加瑞氏吉姆薩A液(約0.5ml-0.8ml)塗片上，並讓染液覆蓋整個標本染色1min；

2. 再將瑞氏吉姆薩B液加於A液上面（滴加量為A液的2-3倍），以嘴或洗耳球吹出微風使液面產生漣漪狀，使兩液充分混合，染色3-10min。（染血片時間可略短，染骨髓片時間應視細胞量多少而異）

3.水洗（沖洗時不能先倒掉染液，應以流水沖去，以防有沉渣沉澱在標本上），乾燥、鏡檢。

注意事項：

1. 染色時間須視何種標本，塗片厚度，有核細胞多少，何種細胞及室溫等而定；通常染血液塗片時滴加B液後染2-4分鍾，染骨髓片則應不少於8分鍾；氣溫較低時，可適當延長染色時間。染色結果如出現嗜酸性粒細胞變鹼，則考慮是否染色時間太長所致。

2.做骨髓塗片時，因為骨髓纖維蛋白含量較高，凝固較快，所以塗片過程要快。骨髓不可用草酸鹽抗凝，否則會使血細胞核變形，核染色質緻密，胞漿空泡形成，出現草酸鹽結晶。

3.染液量需充足，勿使染液蒸發乾燥，以防染料沉著於塗片上。

4.做細胞染色時，當天氣寒冷或濕度較大時，應於37℃溫箱中保溫促干，以免細胞變形縮小或在染色時脫片。

5.染料放置時間越長，染色效果越好。

6. 本試劑應由專業人員使用。

拓展資料

Wrfeht和Giemsa都於1902年報告了各自的新的血液學染色劑，其主要特點是在制備多色性亞甲藍（主要指天青B）方面做了改進，使血細胞和瘧原蟲著色較好，操作簡便。

上述染色法均是含伊紅和亞甲基藍衍生物的復合染料。在臨床檢驗工作中，瑞氏染色法常用於血液、其他體液、分泌物和排泄物塗片中各種細胞的染色，有利於在顯微鏡下觀察細胞形態及對細胞進行分類檢查。

【染色原理】

瑞氏染色分兩相進行，第一相是酸性染料伊紅與細胞中的鹼性物質如血紅蛋白、嗜酸性顆粒等結合；鹼性染料天青B與細胞中的酸性物質如核染色質（chro－matin）、特異中性顆粒、血小板及富含核蛋白的胞質結合。第二相是天青B和伊紅在適宜條件下形成紫色的天青B一伊紅復合物（azure B－eosin complex），這種復合物是形成Romanowsky－Giemsa效應的基礎。

Romanowsky－Giemsa效應包括：①白細胞核染色質染成紫色，瘧原蟲的染色質染成紅色；②中性粒細胞的顆粒及血小板顆粒區染成紫色；③產生本效應必須有兩種染料參與，一種是天青B，另一種是伊紅。

Wittekind（1985）指出，天青B與DNA分子中的磷酸基結合，而伊紅既與DNA分子中的陽離子部位結合，又與天青B結合，與天青B的結合力來源於電子供一受體的電子轉移力，天青B的甲氨基（－NHCHs）與伊紅分子中的叛基（－COOH）間形成氫鍵。因此，天青B是噻嗪類染料中能與伊紅形成復合物的最佳選擇，因為擁有四個甲基側鏈的亞甲藍不能以氫鍵與伊紅結合。

甲醇除作為染料的溶劑，能將瑞氏染料解離成帶正電荷的天青B和帶負電荷伊紅外，因其具有脫水力，還可將細胞固定為一定形態，並使蛋白沉澱為顆粒狀、網狀結構，增加細胞與染料的接觸表面，增強染色效果。

細胞中的各種有機物質（特別是蛋白質）、染料等對環境的州值非常敏感。如環境偏酸，氫離子增多，降低對鹼性染料的親和力；增強伊紅著色，出現異常紅染；相反，則可出現異常藍染。最佳環境應維持在PH值6 4～6、8.因此，必須使用緩沖溶液。

網路_瑞氏染色

瑞氏染色原理及方法_醫學教育網